影響反轉錄效率的因素有哪些?

影響反轉錄效率的因素有哪些?

1970年Baltimore, D. 和Temin, H. M.等學者發現了反轉錄酶,證明遺傳信息不僅由DNA到RNA,也可由RNA到DNA ,這一發現對分子生物學的中心法則進行了修正和補充。

反轉錄就是反轉錄酶以RNA為模板,根據鹼基互補配對原則,合成cDNA的過程。

今天為大家分享有關反轉錄的一些理論知識,主要包括反轉錄酶的概述和反轉錄的實驗策略這兩大方面。

01反轉錄酶的概述

1反轉錄酶的酶學特性

  • 具有依賴於DNA或 RNA模板的DNA聚合酶活性, 反轉錄酶中不具有3′→5′外切酶活性,因此沒有校正功能,所以由反轉錄酶催化合成的DNA出錯率比較高。
  • 具有降解DNA:RNA雜合雙鏈中RNA的RNase H活性;
  • DNA聚合酶活性和RNase H活性均為病毒複製循環所必需。這兩個活性中心在結構上是相互獨立、單獨摺疊的兩個結構域,在反轉錄酶上的相對位置固定。其中,DNA 聚合酶結構域位於N端,RNase H結構域位於C端;

2反轉錄酶的結構研究

Kohlstaedt L A等研究者於1992年在Science上發表一篇報道,提出了HIV-1 RTase的右手結構模型,其中「手指」是與合成中引入的脫氧核苷酸相互作用,「拇指」是與模板相互作用,「手掌」是催化磷酸轉移。

3DNA聚合酶活性

  • DNA聚合酶活性的持續合成能力是指RT酶與引物/模板結合,延伸,解離這樣一個循環所能摻入的核苷酸的平均數目;RTase的持續合成能力比較低 ,通常條件下小於1 kb;所以要繼續鏈的延伸,必需有RTase分子重新結合到引物/模板複合物上 。
  • DNA聚合酶活性的保真性是比較低的,RT酶錯配率是10-6~10-4,而宿主DNA聚合酶錯配率是10-11~10-7,這主要是由於RT酶缺乏5』-3』和3』-5』外切酶活性。

4RNaseH活性

RNase H活性為病毒生命周期中複製循環所必需;可以降解DNA:RNA雜交鏈上的RNA; RNase H活性限制了RT酶的合 成長度;我們可以通過RNase H Minus提升cDNA合成長度。

5幾種代表性RT酶

常見代表性RT酶有HIV1 RTase、AMV RTase和MMLV RTase。其中,HIV1 RTase是研究最早、最透徹的RT酶;AMV RTase是源自禽成髓細胞瘤病毒 (禽源),該酶的RNase H活性強,合成長度短,合成量低,熱穩定性好(42~55℃);MMLV RTase是源自莫洛尼鼠白血病病毒 (鼠源),該酶的RNase H活性弱,合成長度長,合成量高,熱穩定性差(37~42℃)。

02反轉錄實驗策略

1常規反轉錄方法與優化的反轉錄方法

  • 常規的反轉錄體系需要把模板、引物、dNTP、反應緩衝液、RNA 酶抑製劑和反轉錄酶等組分逐一加入同一PCR管,然後進行反轉錄。
  • 優化的反轉錄體系(以我們公司AT321產品為例)就是在反應時,只需加入模板RNA和水即可高效合成第一鏈cDNA。操作簡便,降低操作過程中的污染機率。
  • 常規的反轉錄程序需要1.5h,而優化後的反轉錄程序只需要0.5h(for PCR),或者15min(for QPCR),這樣大大節約的時間。

2反轉錄效率的影響因素

  • RNA模板的品質不好會對反轉錄效率造成一定的影響。
  • 常用的反轉錄引物有Random primer、Oligo(dT) primer和Sequence-specific primer。

Random primer可以隨機與模板結合,然後進行反轉錄;Oligo(dT) primer與真核生物的mRNA的Poly(A)進行有效地結合,然後進行反轉錄;Sequence-specific primer是針對特定基因設置的引物,多用於一步法熒光定量PCR實驗。

當反轉錄體系中加入引物是Oligo(dT) primer時,如果mRNA模板有些高級結構,那麼cDNA合成過程中就會受阻,mRNA上遠離3』端的基因和高級結構處的基因序列就無法獲得。若在前面的反轉錄體系中再加入Random primer,那麼就可以獲得mRNA上遠離3』端的基因,但是高級結構處的序列仍無法獲得,這個在後面的內容會詳細介紹。

  • 反轉錄酶對反轉錄效率影響主要包括RNase H活性、聚合酶活性的合成能力、RT酶保真性和熱穩定性RT酶等等。

RNase H活性在前面內容已有介紹,這裡不再贅述;

聚合酶活性的合成能力主要取決於RT酶的動力學範圍,它是指對不同濃度RNA模板的RT效率一致時,RNA模板的濃度範圍。因此,我們要選擇高品質RT酶,這種RT酶的動力學範圍寬廣,對低濃度RNA可以有效反轉,並且對高濃度RNA沒有抑制。

RT酶保真性低原因是缺乏3 』-5』外切酶活性,那麼我們可以在RT酶中加入具有3』-5』外切酶活性的蛋白,賦予其校正功能,實現高保真RT-PCR。

RT酶熱穩定性提高,可以打開複雜模板中二級結構,cDNA合成繼續,但是要求RT酶熱穩定性高,這個問題可以通過點突變提高RT酶的熱穩定性來解決。

3去除基因組的同時反轉錄

傳統去除gDNA的方法是使用DNase Ⅰ處理,隨後再對該酶進行失火,操作繁瑣;我們公司目前研發出一款新的酶-gDNA Remover,可以有效地切割雙鏈DNA,但對單連DNA沒有作用;所以cDNA合成步驟和DNA去除步驟同時進行,RTase失活和 gDNA Remover失活同時進行。

4microRNA(miRNA)的概述及檢測

  • microRNA在動植物體內廣泛存在,可以抑制特定基因表達,在表達調控中有重要作用;microRNA序列高度保守,長度18 ~ 25 nt。
  • microRNA檢測方法有Northern Blot、Micro array、Real-time RT-PCR(qRT-PCR)等。

其中,Real-time RT-PCR(qRT-PCR)實驗方法可進行高通量檢測,也可檢測微量miRNA;可區分前體miRNA與成熟miRNA;可區分單鹼基差異;並且易於操作。

qRT-PCR檢測microRNA時,可通過miRNA特異引物和miRNA加尾法合成較長的cDNA序列,方便後續基因的檢測。

祝大家科研順利!


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