實驗方法:組織蛋白提取及濃度測定

一.組織蛋白提取

1.組織稱重勻漿

(1)每個EP管放入做多100mg組織,按照100mg/1ml

加入裂解液

(2)裂解液配方(50ul:40ulRIPA+5ul蛋白酶抑製劑+5ul磷酸酶抑製劑+0.5ulPMSF)

(3)2個50ml燒杯,一個放生理鹽水用於清洗勻漿器頭;另一個放冰用於放盛有組織的EP管。每次勻漿2s(或者5-8s)

2.裂解

(1)4℃裂解30min

(2)離心機預冷(15000轉 4℃ 10-15min)

(3)取上清(約可獲得800ul)

如果改天測蛋白濃度,將提取好的上清儲存於-80℃。

二.蛋白濃度測定

1.配製蛋白標準品(5mg/ml→0.5mg/ml工作液)(蛋白標準品可分裝保存1ML)

用RIPA(或PBS)稀釋標準品(如下)

標準品:取10ul稀釋至100ul(每份,通常用兩份)

2.配置BCA工作液

BCA試劑盒A液:B液=50:1

每孔需加工作液200ul,由此計算總體積

3.蛋白濃度檢測上樣(上樣前吹打混勻樣品)

每孔加入4ul(2ul時為10倍稀釋)蛋白樣品,每孔用16ulRIPA(或PBS)補充至20ul(5倍稀釋蛋白樣品,防止蛋白濃度過高,超過監測上限,因此最後得到的蛋白濃度應×5),再加入200ul工作液。

4.37℃孵育30min(可適度延長)

5.上機監測蛋白濃度

(1)打開電腦,酶標儀以及Gen5軟體

(2)放入96孔板(A1對A1)

(3)新建→檢測→輸入檢測波長(根據不同試劑盒波長不同,碧雲天為562nm)→確定

(4)板布局中選標準曲線和樣本,複本3個(也可選擇複本1個,由檢測重複次數決定)

(5)輸入標準品濃度(如上所示)→下一步

(6)樣品三個複本→確定

(7)選定空位對應實際孔位

(8)單擊開始測定 按鈕開始

(9)保存並導出xls文件

(10)選數據處理→標準曲線→確定

(11)選數據處理→圖形

(12)將公式導出至xls文件

(13)自行計算出上樣蛋白濃度

6.計算上樣20ug所需蛋白樣品體積與上樣緩衝液體積(上樣緩衝液為5×,可稀釋>至1×使用,升溫至體溫更利於取用,其取用體積通常為蛋白樣品體積的1/4)。

7.煮蛋白(蛋白通常現用現煮)

使用PCR儀煮蛋白,詳見視頻。煮好的蛋白立刻放入-80℃冰箱保存。

蛋白+上樣緩衝液(緩衝液>1×使用),95-100℃煮5-10min。

冰上立刻降溫5min。

轉自一位實驗大神的筆記。

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