實驗方法:組織蛋白提取及濃度測定
一.組織蛋白提取
1.組織稱重勻漿
(1)每個EP管放入做多100mg組織,按照100mg/1ml
加入裂解液(2)裂解液配方(50ul:40ulRIPA+5ul蛋白酶抑製劑+5ul磷酸酶抑製劑+0.5ulPMSF)
(3)2個50ml燒杯,一個放生理鹽水用於清洗勻漿器頭;另一個放冰用於放盛有組織的EP管。每次勻漿2s(或者5-8s)
2.裂解
(1)4℃裂解30min
(2)離心機預冷(15000轉 4℃ 10-15min)
(3)取上清(約可獲得800ul)
如果改天測蛋白濃度,將提取好的上清儲存於-80℃。
二.蛋白濃度測定
1.配製蛋白標準品(5mg/ml→0.5mg/ml工作液)(蛋白標準品可分裝保存1ML)
用RIPA(或PBS)稀釋標準品(如下)
標準品:取10ul稀釋至100ul(每份,通常用兩份)
2.配置BCA工作液
BCA試劑盒A液:B液=50:1
每孔需加工作液200ul,由此計算總體積
3.蛋白濃度檢測上樣(上樣前吹打混勻樣品)
每孔加入4ul(2ul時為10倍稀釋)蛋白樣品,每孔用16ulRIPA(或PBS)補充至20ul(5倍稀釋蛋白樣品,防止蛋白濃度過高,超過監測上限,因此最後得到的蛋白濃度應×5),再加入200ul工作液。
4.37℃孵育30min(可適度延長)
5.上機監測蛋白濃度
(1)打開電腦,酶標儀以及Gen5軟體
(2)放入96孔板(A1對A1)
(3)新建→檢測→輸入檢測波長(根據不同試劑盒波長不同,碧雲天為562nm)→確定
(4)板布局中選標準曲線和樣本,複本3個(也可選擇複本1個,由檢測重複次數決定)
(5)輸入標準品濃度(如上所示)→下一步
(6)樣品三個複本→確定
(7)選定空位對應實際孔位
(8)單擊開始測定 按鈕開始
(9)保存並導出xls文件
(10)選數據處理→標準曲線→確定
(11)選數據處理→圖形
(12)將公式導出至xls文件
(13)自行計算出上樣蛋白濃度
6.計算上樣20ug所需蛋白樣品體積與上樣緩衝液體積(上樣緩衝液為5×,可稀釋>至1×使用,升溫至體溫更利於取用,其取用體積通常為蛋白樣品體積的1/4)。
7.煮蛋白(蛋白通常現用現煮)
使用PCR儀煮蛋白,詳見視頻。煮好的蛋白立刻放入-80℃冰箱保存。
蛋白+上樣緩衝液(緩衝液>1×使用),95-100℃煮5-10min。
冰上立刻降溫5min。
轉自一位實驗大神的筆記。
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