廉價的活細胞熒光實驗緩衝液

生物狗們最黑暗的時刻,莫過於沒有data,以及蹲在暗房裡面拍confocal……

扯蛋完畢,進入正文。

涉及活細胞的熒光實驗,包括流式細胞分選、激光共聚焦成像等,決定實驗成敗最重要的一點是如何保持細胞的活性。理論上,常規的培養基,包括DMEM或者1640什麼的,便是保證細胞活性的最佳方案。然而,常規培養基中含有大量的熒光物質,會嚴重降低信噪比。

這些造成本底熒光的物質包括:

1、 最著名的pH指示劑Phenolnred(酚紅)。其化學結構含有大量共軛雙鍵,具有熒光特性。研究表明,酚紅的激發波長約在440nnm附近。根據熒光激發的原理,考慮斯托克斯位移(Stokes』nshift),酚紅會發出綠色熒光。因此當我們在做綠色熒游標記時(如GFP,FITC等),酚紅的存在便會造成干擾。

2、 維生素類如Riboflavin(核黃素,維生素B2),它同樣含有大量共軛雙鍵,因此也會干擾我們的熒光實驗。

針對這個問題,已經有公司研發出相應的緩衝液來解決這個問題。比如ThermonFisher旗下Gibco公司的FluoroBrite?nDMEM。根據下圖的廠家測試結果,使用該緩衝液可以有效地提高信噪比。然而這貨一點都不便宜。土豪實驗室可以隨意任性,但荷包緊的就……

前面鋪墊了那麼多,終於進入乾貨的部分。首先我們要理解,維持細胞活性的最低需求是什麼。其實很簡單,只有以下三點:

nn1、 滲透壓

2、 pH值

3、 營養物質

nn滲透壓包含了兩個部分,一個是離子滲透壓,另一個是膠體滲透壓。常規的等滲溶液,包括PBS,生理鹽水等,都能維持離子滲透壓。然而膠體滲透壓往往是容易被忽視的環節。其實只要添加少量的血清或者BSA,就能滿足這個條件了。

nnpH值方面,由於生理鹽水不含緩衝對,因此不適合用於長時間的活細胞實驗。那看來,PBS就沒問題了?其實不然。要讓PBS中緩衝能力其實相當有限,緩衝對的組成比較簡單。這裡,我更加推薦HBSS,除了含有磷酸氫-磷酸二氫緩衝對之外,還有碳酸氫鹽成分。根據個人經驗,添加HEPES這種非營養性的pH緩衝劑,能夠在更長的時間內維持pH穩定。

nn此外,HBSS還含有PBS所不具備的優勢,那就是含有葡萄糖。細胞離開培養基後,如果沒有添加合適的營養物質,那麼很快就會掛掉。本司機曾經研究過細胞在短時間內最低限度的營養需求,其中最重要的是葡萄糖,其次是谷氨醯胺。這兩者恰好也是常規培養基中濃度最高的兩種營養物質。

那麼說了半天,倒是給個配方啊!好吧,見下表:

  • 1X HBSS:分為有鈣鎂版和無鈣鎂版,如果做貼壁細胞的成像,那麼要含有鈣鎂,如果細胞是需要製成懸浮狀單細胞的,用無鈣鎂版。(細胞黏附依賴於這些離子)
  • 1X GlutaMAX:這裡不用L-Glutamine的原因是,GlutaMAX以液體狀保存,容易使用,且穩定性比L-Glutamine不知道高到哪裡去。
  • HEPES:終濃度10-25 mM,這個區間內任意。我習慣用15 mM。
  • FBS:終濃度0.5%-2%。我通常是拿平時分裝剩下的一點點血清來用。如果想更省錢,可以用細胞培養級的BSA(終濃度1%)
  • 其他可加可不加的東西:青-鏈黴素雙抗(這個可以用來做活細胞分選的buffer,防止污染),EDTA(終濃度10 uM,可以進一步保證細胞懸液呈單細胞狀態。注意,部分細胞對EDTA敏感,如果在跑流式時,發現加了EDTA後FSC降低,那麼就是對細胞活性有影響了。)

使用這個配方,細胞在裡面待幾個小時都沒有問題。

一年前曾經拿這個buffer和普通的PBS進行比較,在製備單細胞懸液後進行96孔板的單細胞分選。其中,細胞置於緩衝液的時間約為1小時。最終,經過兩周培養之後,PBS重懸組只有不到5%的孔能夠發現克隆,而使用上述配方的樣品,成克隆率超過50%。

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其實我也就是Google搜fluorescence出來的……


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