電泳緩衝液TAE與TBE,哪個更好?
TAE=Tris base + acetic acid + EDTA
TBE=Tris base + boric acid + EDTA
TBE/TAE buffers are often used in procedures involving D/RNAs.
Tris-acid solutions are effective buffers to keep DNA deprotonated and soluble in water. EDTA is a chelator of divalent cations, which protects the nucleic acids against enzymatic degradation。
-------WIKIPEDIA
我們在進行DNA電泳時都會加入緩衝溶液,常用的緩衝溶液有TAE,含有三羥基氨基甲烷 Tris,乙酸acetate和EDTA 以及TBE( Tris-硼酸borate-EDTA )。
緩衝液的作用是什麼?緩衝液的作用之一是維持溶液的pH穩定。 電流通過水時,在陽極發生氧化反應,生成氧氣以及氫離子;在陰極發生還原反應,生成氫氣以及氫氧根離子。長時間電泳將會使陽極變酸,陰極變鹼。一個好的緩衝系統應該有較強的緩衝能力,使溶液兩極的pH保持基本穩定。
電泳緩衝液的另一個作用是使溶液帶有一定的導電性,以利於DNA分子的遷移。 DNA為鹼性物質,在電泳(緩衝液pH=8)時帶負電荷,由負極向正極遷移。電泳緩衝液還有一個組分是EDTA,目的是螯合Mg2+等離子,防止電泳時激活DNA酶。由於核酸酶需要這些離子,EDTA可以將這些離子牢牢抓住,避免核酸降解。但要注意的是,鎂離子同時是很多酵素的輔助因子,如限制酶,DNA聚合酶等等,因此EDTA的濃度一般不會太高(通常在1mM左右)。
TAE or TBE哪個更好?
DNA電泳時應該用哪個?這其實取決於你的實驗目的。下面我們來看看二者的區別[1]。- TBE的電導率大於TAE的電導率。因此相比於TAE,TBE不太會導致電泳槽內過熱的情況發生,長時間電泳推薦使用TBE
- 硼酸是酶的抑製劑,因此如果你需要分離電泳的DNA用於酶切反應,建議使用TAE作為電泳緩衝溶液
- TBE對於較小片段的分離效果更好。對於小於300bp的片段,在2%的瓊脂糖凝膠上,TBE中的遷移速度更快
- TAE適用於大片段的分離,大於2kb的片段在TAE中的遷移速度更快(0.8%的瓊脂糖凝膠中),速度比在TBE中快出約10%
- TAE更適用於回收DNA片段。
- 相比於TBE,TAE對於超螺旋的DNA解析度更高[2]
- 40 mM Tris (pH 7.6)
- 20 mM acetic acid
- 1 mM EDTA
50x TAE儲液配製方法:
將Tris(FW=121) 242g,100 ml 0.5 M EDTA, 57.1 ml的冰醋酸溶解在600 ml的去離子水中;而後調節pH至8.3,加去離子水定容至1L後,室溫保存。使用時稀釋50倍 即1×TAE BufferTBE緩衝液
TBE緩衝液可以配置成 5× or 10×的儲液。1x TBE 緩衝液的成分是:- 89 mM Tris (pH 7.6)
- 89 mM boric acid
- 2 mM EDTA
10x TBE 儲液配製方法:
將Tris(FW=121)108g,硼酸(FW=61.8)55g,40 ml 0.5 M EDTA 溶解在600 ml的去離子水中;而後調節pH至8.3,加去離子水定容至1L後,室溫保存。使用時稀釋10倍 即1×TBE Buffer參考文獻[1]三浦裕, 和気弘明, 加藤泰治. TBE, or not TBE; that is the question: Beneficial usage of tris-borate for obtaining a higher resolution of small DNA fragments by agarose gel electrophoresis[J]. Nagoya medical journal, 1999, 43(1): 1-6.[2]Dingman C W, Peacock A C. Analytical studies on nuclear ribonucleic acid using polyacrylamide gel electrophoresis[J]. Biochemistry, 1968, 7(2): 659-668.[3]http://www.bio-rad.com/webroot/web/pdf/lsr/literature/Bulletin_6205.pdf原文鏈接電泳緩衝液TAE與TBE,哪個更好? | BioEngX推薦閱讀:
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